细胞衰老β-半乳糖苷酶染色(Senescence β-Galactosidase Staining)是一种基于衰老时衰老相关β-半乳糖苷酶(senescence-associated β-galactosidase; SA-β-Gal)活性水平上调而对衰老细胞或组织进行染色检测的方法。在普通光学显微镜下就可以观测到细胞或组织衰老情况。本实验可以用于培养细胞的衰老检测,也可以用于冰冻切片的衰老检测。
绝大多数正常细胞被认为仅有有限的分裂能力,在不能分裂后就进入衰老(senescence)状态。此时细胞仍然是存活的,但细胞的基因和蛋白的表达谱发生了很大的改变。衰老的细胞不能在一些常规刺激下再诱导细胞分裂,并且衰老细胞的细胞周期分布也比较特殊,不同于一些损伤诱导的细胞休眠,也不同于细胞生长接触抑制的情况。衰老细胞通常体积变大,并表达在pH6.0时有高酶活性的β-半乳糖苷酶。细胞衰老也被认为是生物体抑制肿瘤的一种方式,同时也是生物体老化(aging)的一种潜在原因。
主要用于衰老细胞的染色。
衰老细胞呈深蓝色,细胞核呈红色。
复温-固定-PBS洗涤-染色工作液孵育-染核-封片-镜检。
1、新鲜组织干冰运输,细胞爬片需用专用固定液固定。
2、切完且固定后的冰冻切片-20℃运输。
1、X-Gal溶液需室温完全解冻混匀后再使用。
2、β-半乳糖苷酶染色液A和B需提前恢复至室温后再使用,配制好的染色工作液需充分混匀无沉淀方可使用。
3、衰老细胞β-半乳糖苷酶染色反应依赖于特定的pH条件,不能在CO2培养箱中进行孵育显色,否则会影响染色工作液的pH,导致染色失败。
4、配制染色工作液时请选择聚丙烯(PP)或玻璃材质的耗材,不能用聚苯乙烯(PS)材质的耗材。
5、在显色2 h-过夜期间需多次观察显色情况,时间过短可能导致阴性结果;时间太长则可能导致假阳性。显色时间与样本本身所含的β-半乳糖苷酶量多少有密切关系。
6、在配制染色工作液前,需检查染色液A的pH值,如果不是6.0(可能因保存条件导致pH发生改变),需用HCl或NaOH调节pH至6.0再使用。
7、组织切片的β-半乳糖苷酶染色,对于样本的前期准备要求较高,样本需-80℃保存,并尽快完成检测。因为β-半乳糖苷酶非常容易失活,样本保存不当或时间过久,都可能导致酶失活,则染色时没有阳性。
8、操作时请穿实验服,佩戴一次性手套。
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